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纖維素(CLL)含量試劑盒說明書

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纖維素(CLL)含量試劑盒說明書

                          可見分光光度法

注意: 正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。

規(guī)格50T/48S

正式測定前取2-3個預期差異較大的樣本做預測定

測定意義:

纖維素是由葡萄糖組成的大分子多糖,通常與半纖維素、果膠和木質(zhì)素結合在一起,是植物細胞

壁的主要結構成分。纖維素是一種重要的膳食纖維,是自然界中分布最廣、含量最多的 一種多糖。

測定原理:

纖維素為β -葡萄糖殘基組成的多糖,在酸性條件下加熱能分解成β -葡萄糖。β -葡萄糖在強酸作 用下,可脫水生成β -糠醛類化合物。β -糠醛類化合物與蒽酮脫水縮合,生成糠醛衍生物。顏色的深  淺可間接定量測定纖維素含量。

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL 玻璃比色皿、80%乙醇、丙酮、濃硫酸(不 允許快遞) 、研缽和蒸餾水。

試劑的組成和配制:

試劑一: 液體 50mL× 1 瓶,4℃保存。

試劑二: 粉劑×1 瓶,4℃避光保存。

試劑三: 液體 10mL× 1 支,4℃保存。

標準品: 粉劑10mg× 1支,4℃保存;  10mg 無水葡萄糖(干燥失重<0.2%),臨用前加入 1mL 蒸餾水溶解,配制成 10mg/mL 葡萄糖溶液備用,4℃可保存 1 周,或者用飽和苯甲酸溶液溶解, 可保存更長時間。

樣品的前處理:

1 、細胞壁的提取: 取約 0.3g 樣本(計為M1),加入 1mL 80%乙醇,室溫快速勻漿,95℃水浴      20min ,冷卻至室溫,4000g 25℃離心 10min ,棄上清。沉淀加入 1.5mL80%乙醇和丙酮各洗一遍  (渦旋振蕩 2min 左右,4000g 25℃離心 10min ,棄上清即可 ,沉淀即為粗細胞壁,加入 1mL  劑一(去除淀粉) 浸泡 15 小時,4000g 25℃離心 10min ,棄上清,1mL 80%乙醇洗滌兩次,棄上 清,將沉淀干燥,稱重得細胞壁物質(zhì)(CWM質(zhì)量計為M2)。

2 、纖維素的提?。?/span> 稱取烘干的 CWM  5mg(計為W),加入 0.5mL 蒸餾水充分勻漿,勻漿液轉(zhuǎn)移  EP 管中,用蒸餾水定容至 0.5mL ,置于冰水浴中,緩慢加入 0.75mL 濃硫酸,混勻,冰水浴中 靜置 30min 。8000g 4℃離心 10min ,取上清液,用蒸餾水稀釋 20 倍后待測。

標準溶液準備:

10mg/mL 葡萄糖標準液進行二倍稀釋得到 0.2、0. 1、0.05、0.025、0.0125、0.006250.003125、 0.00156mg/mL 標準溶液備用。

測定步驟:

1 、分光光度計預熱 30min 以上,調(diào)節(jié)波長至 620nm ,蒸餾水調(diào)零。

 



本產(chǎn)品僅供科學研究使用! 請勿用于臨床、診斷、食品、化妝品檢測等用途!


2 、調(diào)節(jié)水浴鍋至 95 度。

3 、工作液的配制: 在試劑二中加入 4mL 試劑三,充分溶解,如較難溶解,可加熱攪拌;  不完的試劑 4℃保存一周;

4 、加樣表(在 EP 管中反應 

 

試劑(μL

標準管

測定管

樣本


300

標準品

300


工作液

70

70

濃硫酸

630

630

混勻,置 95度水浴中 10min(蓋緊,以防止水分散失 冷卻至室溫后,于 620nm 處讀數(shù)。 纖維素含量計算:

1 、標準曲線繪制:

 0.2 、0. 1 、0.05 、0.025 0.0125 、0.00625 、0.003125 、0.00156mg/mL 葡萄糖標準溶液為橫坐

標,ΔA 為縱坐標繪制標準曲線,得到線性回歸方程 y=kx+b ,將ΔA′代入方程得到 xmg/mL);

2 、按細胞壁干重計算

纖維素含量(mg/mg 鮮重)=x×稀釋倍數(shù)×V 提取÷W

3 、按總樣本質(zhì)量計算

纖維素含量(mg/mg 鮮重)=x×稀釋倍數(shù)×V 提取÷W×M2÷M1

V 提取: 提取后體積,1.25mLW:樣品質(zhì)量,mg;稀釋倍數(shù): 20;M1:總樣本質(zhì)量,g; M2:細胞壁物質(zhì)CWM g

 

注意事項

1. 加熱過程中有劇烈反應,震蕩時輕搖,以免壓力過大噴出造成人生傷害。

2. 濃硫酸具有強腐蝕性,建議戴防護手套操作。

3. 如樣本OD值大于1.5 ,可在纖維素提取過程中擴大稀釋倍數(shù),計數(shù)過程中乘以對應的稀釋倍數(shù)。

 

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